一、原理

脫氧核糖核酸（deoxyribonucleicacid，DNA）是一切生物細胞的重要組成成分，主要存在于細胞核中，鹽溶法是提取DNA的常規技術之一。從細胞中分離得到的DNA是與蛋白質結合的DNA，其中還含有大量RNA，即核糖核蛋白。如何有效地將這兩種核蛋白分開是技術的關鍵。DNA不溶于0.14mol/L 的NaCl溶液中，而RNA則能溶于0.14mol/L 的NaCl溶液之中，利用這一性質就可以將二者從破碎細胞漿液中分開。制備過程中，細胞破碎的同時就有Dnase釋放到提取液中，使DNA因被降解而影響得率，在提取緩沖液中加入適量的檸檬酸鹽和EDTA，既可抑制酶的活性又可使蛋白質變性而與核酸分離，再加入陰離子去垢劑0.15％的SDS，經過2h攪拌，或用氯仿－異醇除去蛋白，通過離心使蛋白質沉淀而除去，得到的是含有核酸的上清液。然后用95％的預冷乙醇即可把DNA從除去蛋白質的提取液中沉淀出來。 

二、材料、儀器設備及試劑： 

（一）材料：去胚乳的小麥芽，新鮮花椰菜等。 
（二）儀器設備：1. UV－120分光光度計；2. 磨口三角瓶；3. 具塞刻度試管；4. 研缽等器皿。 

試劑：
1. 研磨緩沖液：稱取59.63gNaCl，13.25g檸檬酸三鈉，37.2gEDTA－Na分別溶解后合并為一，用0.2mol/L 的NaOH調至pH7.0，并定容至1000ml。
2. 10×SSC溶液：稱取87.66gNaCl和44.12g檸檬酸三鈉，分別溶解，一起定容至1000ml。
3. 1×SSC溶液：用10×SSC溶液稀釋10倍。
4. 0.1×SSC溶液：用1×SSC溶液稀釋10倍。
5. rnase溶液：用0.14mol/LNaCl溶液配制成25mg/ml 的酶液，用1mol/L HCl，pH至5.0，使用前經80℃水浴處理5min（以破壞可能存在的Dnase）。
6. 氯仿－異戊醇：按24ml氯仿和1ml異戊醇混合。
7. 5mol/L 高氯酸鈉溶液：稱取NaClO4．H2O7 0.23g，先加入少量蒸餾水溶解再容至100ml。
8. SDS（十二烷基硫酸鈉）化學試劑的重結晶：將SDS放入*中達到飽和為止，然后在70～80℃的水浴中溶解，趁熱過濾，冷卻之后即將濾液放入冰箱，待結晶出現再置室溫下涼干待用
9. 1mol／L HCl。